动物实验技术
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常见实验动物处死方法的选择

2016-05-25来源:未知
(一)狗、猫、兔、豚鼠

1、空气栓塞法

向动物静脉内注入一定量的空气,使之发生栓塞而死。当空气注入静脉后,可在右心随着心脏的跳动使空气与血液成泡沫状,随血液循环到全身。如进到肺动脉,可阻塞其分支,进入心脏冠状动脉,造成冠状动脉阻塞,发生严重的血液循环障碍,动物很快致死。一般兔、猫等静脉内注入20~40ml空气即可致死。每条狗由前肢或后肢皮下静脉注入80~150ml空气,可很快致死。

2、急性失血法

先使动物轻度麻醉,如狗可按每公斤体重静脉注射硫喷妥钠20~30mg,动物即很快入睡。暴露股三角区,用锋利的杀狗刀在股三角区作一个约10厘米的横切口,把股动、静脉全切断,立即喷出血液。用一块湿纱布不断擦去股动脉切口周围处的血液和血凝块,同时不断的用自来水冲洗流血,使股动脉切口保持畅通,动物在3~5分钟内即可致死。采用此种方法,动物十分安静,对脏器无损伤,对活杀采集病理切片标本是一种较好的方法。

如果处死狗的同时要采集其血液时,则在用硫喷妥钠轻度麻醉后,将狗固定在狗手术台上。分离颈动脉,插一根较粗的塑料管,放低狗头,打开动脉夹,使动脉血流入装有抗凝血的容器内,并不断摇晃,以防血液凝固。

3、破坏延脑法

用器具破坏延脑或用木锤用力击其后脑部。

此文转载来源:丁香通


4、开放性气胸法

将动物开胸,造成开放性气胸。这时胸膜腔与大气压相等,肺脏因受大气压缩发生肺萎缩,纵隔摆动,动物窒息死亡。

5、化学药物致死法

静脉內注入一定量的氯化钾溶液,使动物心肌失去收缩能力,心脏急性扩张,致心脏迟缓性停跳而死亡。每条成年兔由兔耳缘静脉注入10%氯化钾溶液5~10ml;每条成年狗由狗前肢或後肢下静脉注入20~30ml。即可致死。

静脉內注入一定量的福尔马林溶液,使血液內蛋白凝固,动物由于全身血液循环严重障碍和缺氧而死。每条成年狗静脉注入10%福尔马林溶液20ml即可致死。也可将福尔马林与酒精按一定比例配成动物致死液应用。

皮下注射士的年致死:豚鼠剂量为3.0~4.4mg/kg体重,兔0.5~0.5mg/kg体重,狗0.3~0.42mg/kg体重,猫1.0~2.0mg/kg体重。

经口或注年DDT致死;(LD50):

豚鼠:经口0.4g/kg体重,皮下0.9g/kg体重。
兔:经口0.3g/kg体重,皮下0.25g/kg体重;静脉0.043g/kg体重。
狗:静脉0.067g/kg体重。
(二)蛙类

常用金属探针插入枕骨大孔,破坏脑脊髓的方法处死。

将蛙用湿布包住,露出头部,左手执蛙,并用食指按压其头部前端,拇指按压背部,使头前俯;右手持探针由凹陷处垂直刺入,刺破皮肤即入枕骨大孔。这时将探针尖端转向头方,向前深入颅腔,然后向各方搅动,以捣毁脑组织。再把探针由枕骨大孔刺入并转向尾方,刺入椎管,以破坏脊髓。脑和脊髓是否完全破坏,可检查动物四肢肌肉的紧张性是否完全消失。拔出探针后,用一小干棉球将针孔堵住,以防止出血。

操作过程中要防止毒腺分泌物射入实验者眼内。如被射入时,则需立即用生理盐水冲洗眼睛。

(三)大鼠、小鼠

1、脊椎脱臼法

右手抓住鼠尾用力向后拉,同时左手拇指与食指用力向下按住鼠头。将脊髓与脑髓拉断,鼠便立即死亡。

2、断头法

用剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉。详细方法可参考大、小鼠断头取血方法。鼠由于剪断了脑脊髓,同时大量失血,很快死亡。

3、击打法

右手抓住鼠尾,提起,用力摔击其头部,鼠痉挛后立即死去。

4、急性大失血法

可采用鼠眼眶动脉和静脉急性大量失血方法使鼠立即死亡。

5、药物致死法

吸入一定量的一氧化碳、乙醚、氯仿等均可使动物致死。皮下注射士的年,吸入乙醚、氨仿,均可致死。士的年注射量,小鼠0.76~2.0mg/kg体重,大鼠3.0~3.5ml/kg体重。氯化钾处死大鼠剂量:25%溶液0.6ml/只静脉注入。 

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